miRNA海绵—长效抑制miRNA[创新技巧]

【字体: 时间:2010年02月25日 来源:生物通

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  如何研究miRNA的功能?loss-of-function的研究当然必不可少。研究人员开发出与miRNA互补的寡核苷酸,作为mRNA结合的竞争性抑制剂。这些抑制剂实现了短期分析,在细胞培养物以及某些动物实验中都获得了成功。但是,如何实现miRNA的长期抑制?miRNA海绵应运而生……

随着研究的深入,已知miRNA的数量与日俱增,目前Sanger miRBase数据库中收录的人miRNA已达721条。不过,大部分miRNA的功能仍是未知数。在基因功能研究中,最有效的方法是阻止特定基因的功能,然后了解其后果。miRNA同样如此。

然而,相比之下,miRNA的功能研究要困难得多。为什么?首先,miRNA没有蛋白产物,这使得研究复杂化。其次,miRNA的生物发生有多个步骤。最初的转录本为pri-miRNA,它在细胞核中加工形成前体pre-miRNA。这个茎环结构的RNA输出到细胞质,被Dicer酶进一步加工,最终形成了成熟的miRNA。成熟的miRNA没有poly(A)尾巴,因而检测起来要颇费一番心思。

除了检测,miRNA的功能丧失(loss-of-function)研究也是难题。标准的RNAi技术行不通。成熟的miRNA与siRNA不相容,因为它们两者都能进入RISC复合物;pre-miRNA是茎环结构的,siRNA无从下手;pri-miRNA貌似是siRNA最容易靶定的,但一个是细胞核,一个在细胞质,好似牛郎织女,无法见面。

当然,科学家们也不是束手无策。miRNA不是能与互补的mRNA结合吗?他们就开发出与miRNA互补的寡核苷酸,作为mRNA结合的竞争性抑制剂。这些抑制剂实现了短期分析,在细胞培养物以及某些动物实验中都获得了成功。但是,如何实现miRNA的长期抑制?

2007年,麻省理工大学的Phillip Sharp及他的同事利用相似的原理,开发出一种长期抑制miRNA基因的高效方法1。他们称之为miRNA海绵(miRNA sponge),意思是吸满了miRNA,这样它就无法与天然靶点结合。miRNA海绵是一条mRNA,其3’ 非翻译区(UTR)包含若干个miRNA靶定位点(如下图)。更重要的是,这些靶定位点在RISC切割位点有一些错配。这样,抑制剂mRNA就不会被降解,而与RISC稳定结合,让它远离天然的mRNA靶点。

(图片来自Nature Methods)

经研究证实,这些miRNA海绵是高效的miRNA抑制剂,其效力与反义寡核苷酸相当。由于miRNA与靶点的相互作用是依赖种子区域(seed region,miRNA的第2-8位),这样miRNA海绵对家族中亲缘关系接近的所有miRNA都有效,即特异性不高,这也有利有弊。制备某个家族缺陷的转基因小鼠变得相当容易。但如果你想要了解某个miRNA的特定功能,那就得将与之接近的miRNA全部去除。

miRNA海绵的应用潜力无穷。它可用于靶点预测的验证,也能分析miRNA的功能丧失表型。由于miRNA海绵是由表达质粒编码的,那么它也很容易推广到其它形式,譬如慢病毒、腺病毒或转基因,适合各种不同的细胞类型。Sharp还在研究中证实,在UTR上多加几个miRNA结合位点,能增加反义序列的量,从而提高海绵的效力。从原理上来说,miRNA海绵的CMV启动子也可以换成其它组织特异的启动子,让它们在果蝇、植物等模式生物中起作用。

目前多个顶尖研究机构,例如约翰霍普金斯大学,埃默里大学的研究人员都纷纷使用miRNA海绵进行功能研究,详见《miRNA专家谈之三:如何上调或下调miRNA?》。同时,miRNA海绵的改造也在不断进行中。

美国哈佛医学院的Carlos Loya及其同事开发出果蝇miRNA海绵(miR-SP),在精确的时空分辨率下解析每个miRNA的功能2。他们利用的是基于外源DNA重组酶Cre或转录因子Gal4的表达系统,将修饰的miRNA互补寡核苷酸置于上游激活序列(UASs)的下游,实现了体内组织特异的miRNA海绵表达。miR-SP能鉴定组织特异性的miRNA功能丧失表型,确定效应器的空间调节,并了解miRNA与其他基因之间的相互作用。

研究人员发现这种构建体与Gal4的组合能表达出足够的miRNA沉默物,在完整的果蝇中实现miRNA的时空抑制。利用miR-SP系统,他们鉴定出保守的miRNA miR-8在神经肌肉结点形成上的重要作用。这项研究充分体现了miRNA海绵作为一种手段,在探索体内miRNA功能上的潜力。它还有望去除miRNA家族中种子序列相似的多个成员。

毫无疑问,miRNA海绵将会越来越红。(生物通 余亮)

参考文献:
1. Margaret S Ebert, et al. MicroRNA sponges: competitive inhibitors of small RNAs in mammalian cells. Nature Methods 4, 721 - 726 (2007)

2. Carlos M Loya, et al. Transgenic microRNA inhibition with spatiotemporal specificity in intact organisms. Nature Methods 6, 897 - 903 (2009)

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